探索生命奥秘,生殖生物学与蛋白质组学的莫逆之交【景杰精选】第01期
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配子发生调控
Cell Reports:酰化修饰组学揭示精子发生过程中总组蛋白高乙酰化的分子机制
在哺乳动物精子发生过程的晚期会发生一个独特的生理性的全基因组范围的组蛋白高乙酰化,并与随后发生的组蛋白-鱼精蛋白取代过程相关。组蛋白修饰的异常改变可能会损伤精子的发育过程,导致雄性不育。2018年,Cell Reports 报道了Shiota 等研究者运用酰化修饰组学技术,揭示了精子发生过程中雄性基因组最终致密化之前总组蛋白高乙酰化的分子机制。
Nat Commun:四川大学团队蛋白组学研究揭示精子鞭毛发育的潜在机制
精子缺陷是男性不育的直接原因,包括精子数量减少、能动性降低和形态异常。研究表明超过80 %的男性不育是由精子能动性受损引起的,而精子形态对精子移动起了至关重要的作用。精子鞭毛的多发形态异常(MMAF)包括卷曲、弯曲、不规则、短或/和缺失,以及超微结构缺陷。这些因素能导致精子形态异常和活力降低。
研究者在2个近亲结婚家系中,发现2名精子鞭毛多发形态异常(MMAF)的不育患者,经过全外显子组测序和分析,发现两名患者均存在QRICH2基因的纯合无义突变。随后研究者利用基因敲除技术,构建了Qrich2基因的KO小鼠,发现Qrich2 KO小鼠表现出MMAF表型, 证明QRICH2为MMAF新的致病基因。同时通过TMT定量蛋白质组学方法并结合功能实验,证实QRICH2能够稳定并上调与精子鞭毛结构发育相关的蛋白,揭示其在精子鞭毛形成过程中的重要作用。QRICH2有害突变的筛选对于男性不育的临床分子诊断具有重要意义。
生殖及相关疾病
Nature:卵巢癌及附近基质的大队列蛋白质组学分析
卵巢癌(Ovarian Cancer)恶性程度高、预后差,其发病率仅次于宫颈癌和子宫内膜癌,居于女性生殖系统恶性肿瘤第三位。近年来已有部分高质量的文章从蛋白质组学角度,对大队列卵巢癌患者进行蛋白水平或修饰水平进行整体研究,就其预后差,耐药性强等特点找到一些端倪。如:2016年在Cell主刊上报道的大规模卵巢癌蛋白基因组学与磷酸化修饰组学研究,发现卵巢癌在蛋白或磷酸化水平的分型规律,且蛋白磷酸化水平与病人预后生存期有显著相关性;2018年Cell主刊报道了马克思普朗克生物化学研究所研究者对晚期高级别浆液性卵巢癌(HGSC)肿瘤样本的蛋白质组学研究,发现了CT45的表达与卵巢癌患者化学耐药性存在明显相关。
随着对卵巢瘤研究的日益加深,研究者逐渐将卵巢癌转移成因的研究目光转移到卵巢癌以及其附近基质微环境的关系上来。2019年5月,来自芝加哥大学的Ernst Lengyel研究组与德国马普所Matthias Mann组等合作在Nature主刊报道了关于卵巢癌以及卵巢癌附近基质的大队列蛋白质组学研究工作。
研究者利用显微切割技术配合微量蛋白质组学的方法,对来自11名HGSC患者的组织样本进行显微切割后获得的107个微量样品(包括浆液性输卵管原位肿瘤,侵袭性输卵管病变,浸润性卵巢病变和网膜转移四种肿瘤或基质样品)(样本策略)进行Label-free蛋白质组学分析(质谱策略),实现了研究者对肿瘤迁移中肿瘤基质关键调控机制的筛选与发掘。随后研究者进一步利用蛋白质组学的大数据,结合已有的或预期的肿瘤调控猜想,成功发现了NNMT作为基质细胞对肿瘤转移的关键调控靶点。
图1 卵巢癌的蛋白质组学研究策略
MCP:蛋白组学揭示TIGAR蛋白在肥胖影响生殖的关键作用
肥胖对女性怀孕和生育有非常重要的影响,不仅会增加不育的风险,也与流产、后代先天性异常的风险增加有关。另外,肥胖还会损害受孕辅助技术的怀孕率。因此,对肥胖的认知显得格外重要。2018年5月,南京医科大学生殖医学国家重点实验室王强教授课题组在蛋白质组学专业学术期刊Molecular & Cellular Proteomics上发表研究结果,揭示了TIGAR蛋白在肥胖影响生殖的关键作用。
研究者通过基于质谱的蛋白质组学定量分析肥胖小鼠与正常小鼠卵母细胞中的蛋白组差异,发现肥胖小鼠成熟卵母细胞中TIGAR蛋白的显著减少,使用体外敲低和过表达测定进一步研究了TIGAR在小鼠卵母细胞成熟过程中的作用。值得注意的是,在高脂饮食小鼠中强制表达TIGAR,不仅可以降低ROS水平,保护肥胖小鼠的卵母细胞免受氧化应激,还能部分防止纺锤体解体和染色体错位,减数分裂缺陷。研究揭示了TIGAR蛋白对抗肥胖的重要意义:高表达TIGAR可以保护肥胖小鼠的卵母细胞免受氧化应激和减数分裂缺陷,减少肥胖的负面影响。
Cell Reports:衣原体诱导发生上皮间质转化,打开宿主免疫“防火墙”
沙眼衣原体(Chlamydia trachomatis,Ctr)是一系列传染病的病原体,与子宫颈癌和卵巢癌直接或间接相关,它可以作为人乳头瘤病毒HPV感染的辅助因子,与宿主之间具有非常复杂的相互作用关系。2019年1月,来自德国马克斯普朗克感染生物学研究所的研究人员在国际专业学术期刊Cell Reports杂志上发文,运用磷酸化修饰组学和转录组学揭示Ctr如何诱导宿主细胞发生上皮间质转化,从而打开免疫“防火墙”的分子机制。
病原菌和宿主之间的识别从本质上讲是蛋白质之间的相互作用,研究通过磷酸化修饰组学和转录组学联合分析,揭示了Ctr诱导的宿主细胞信号通路改变的复杂性及其对细胞功能的影响。研究结果全面的展示了宿主细胞总成分及核成分中Ctr应答性激酶网络,从结果中鉴定了受调控的ERK和MAPK的底物TFs的磷酸化水平,同时证明了ETS1和ERF在EMT表型形成中的作用。本研究结果揭示了更大范围的Ctr调控的信号传导,为Ctr致病过程以及其他人类生殖道感染提供新的见解。
胚胎发育调控
哺乳动物胚胎发育是一个受到严密控制的过程,单个受精卵通过这一过程生成大量功能迥异的细胞。表观遗传学修饰可以在不改变DNA序列的情况下调控基因的活性,对于人类发育和人类疾病有深远的意义。
Nature综述:哈佛医学院施扬组综述组蛋白甲基化在动物发育中的作用和调节
发育期间组蛋白甲基化是高度动态的。早期胚胎系统显示出独特的组蛋白甲基化模式,这确保在每种组织类型中表达适当的基因。研究甲基化对胚胎干细胞多能性和分化的影响有助于阐明组蛋白甲基化的发育作用。2019年7月2日,哈佛医学院施扬及Ashwini Jambhekar共同通讯在Nature Reviews Molecular Cell Biology 在线发表综述,系统介绍了组蛋白甲基化在动物发育中的作用和调节机制。
在文章中,研究者讨论了组蛋白甲基化对基因活性的影响以及在发育过程中调节组蛋白甲基化的因子。综述了组蛋白甲基化调节蛋白对胚胎发生不同阶段的总体影响及其在促进特定器官系统发育中的作用;另外还介绍了组蛋白甲基化如何影响基因组印记和HOX基因的调控;并讨论了不同组蛋白甲基化调节蛋白在促进多能性维持和驱动分化中的作用。最后,讨论了由组蛋白甲基化调节因子突变引起的人类遗传性疾病,这进一步揭示了组蛋白甲基化在生物体发育中的关键作用。
由组蛋白甲基化调节的发育过程
Nat Chem Biol:蛋白质组学鉴定调控果蝇发育的O-GlcNAc修饰蛋白
O-GlcNAc是核蛋白、细胞质蛋白上广泛存在的可逆糖基化修饰,该修饰主要发生在蛋白质丝氨酸、苏氨酸残基,参与胚胎早期发育的调控。2017年,著名学术期刊Nature Chemical Biology发表了运用蛋白质组学鉴定果蝇胚胎发育时期O-GlcNAc糖基化蛋白质。
研究者首先建立了一种简单的O-GlcNAc糖基化亲和富集手段,从而实现了对果蝇胚胎O-GlcNAc糖基化蛋白修饰组分析,质谱鉴定到了3558种蛋白。对这些蛋白进行分类分析,约14%为核酸结合蛋白,大多数参与RNA运输与加工。并鉴定到Gug、mop等多种OGT糖基化底物蛋白,表明蛋白糖基化参与调控胚胎发育时期的重要过程。同时质谱也鉴定到参与泛素化蛋白酶体、DNA复制、细胞凋亡等途径的蛋白,有趣的是很多参与蛋白也和亨廷顿疾病以及帕金森综合症发病机理相关。而且后续的遗传实验表明,一些蛋白OGT糖基化和果蝇发育有关,修饰位点突变后会导致果蝇发育异常 。
果蝇胚胎O-GlcNAc糖基化蛋白大多数参与RNA运输与加工
Genome Res:首次揭示果蝇发育过程中蛋白质的动态变化
果蝇是经典的模式生物,目前针对果蝇发育的高通量基因表达研究主要集中在mRNA转录组水平,另一方面,mRNA与蛋白质的弱相关性已经在酵母、线虫、小鼠中被证实,因此直接分析果蝇生命周期各阶段的蛋白质表达谱有助于我们深入研究目标基因的功能以及发育的时空调控机制。2017年,国际著名期刊Genome Research的文章发文,首次对果蝇变态发育各个阶段进行了高通量蛋白质组学研究,分析了不同阶段蛋白表达谱的共性和特异性。
研究者通过高通量蛋白组学技术,对果蝇生命周期的15个时间节点进行了分析,总共鉴定到7952个蛋白。通过进一步的筛选,发现其中有~1400个蛋白在果蝇的生命周期表达量基本稳定(例如微管蛋白、肌动蛋白、热激蛋白等),~2000个蛋白的表达量发生了显著改变,暗示其与发育的时空特异性相关。 值得一提的是,该研究再一次证明了mRNA和蛋白质表达水平的弱相关性。蛋白质组数据不仅仅是对基因组、转录组数据的完善,更是对系统生物学框架下研究基因表达、调控和功能具有直接的指导意义。
果蝇生命周期的15个时间节点
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参考文献
Shumeng Liu, et al., 2017, Chromodomain protein CDYL acts as a crotonyl-CoA hydratase to regulate histone crotonylation and spermatogenesis. Molecular cell.
Shiota H, et al., 2018, Nut Directs p300-Dependent, Genome-Wide H4 Hyperacetylation in Male GermCells. Cell Rep.
Ying Shen, et al., 2019, Loss-of-function mutations in QRICH2 cause male infertility with multiple morphological abnormalities of the sperm flagella. Nature Communications.
Eckert MA, et al., 2019, Proteomics reveals NNMT as a master metabolic regulator of cancer-associated fibroblasts. Nature.
Haichao Wang, et al., 2018, Loss of TIGAR induces oxidative stress and meiotic defects in oocytes from obese mice. Molecular & Cellular Proteomics.
Zadora, P. K., et al., 2019, Integrated Phosphoproteome and Transcriptome Analysis Reveals Chlamydia-Induced Epithelial-to-Mesenchymal Transition in Host Cells. Cell Reports.
Ashwini Jambhekar, et al., 2019, Roles and regulation of histone methylation in animal development. Nature Reviews Molecular Cell Biology.
Selvan, N. et al., 2017, A mutant O-GlcNAcase enriches Drosophila developmental regulators. Nat Chem Biol .
Casas-Vila, et al., 2017, The developmental proteome of Drosophila melanogaster. Genome Res.
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